RESUMO
Introducción y objetivo. Las células madre son candidatas terapéuticas para una amplia gama de enfermedades. Resultan de gran interés en Cirugía Plástica para el tratamiento de heridas crónicas, transferencia de tejido adiposo y colgajos. El objetivo de este estudio es describir el método de aislamiento, cultivo y caracterización de células madre derivadas de tejido adiposo y cómo estas pueden precondicionarse con hipoxia y generar cambios in vitro en su capacidad proliferativa y migratoria. El trabajo es un complemento didáctico a otro publicado por nosotros en esta misma revista utilizando esta metodología en comparación al grupo de retardo de colgajo y grupo control en colgajos cutáneos aleatorizados en ratas. Métodos. Obtuvimos las células madre de tejido graso ínguino-abdominal de ratas adultas: 10 en el grupo de células madre derivadas de tejido adiposo y otras 10 en el grupo de células madre derivadas de tejido adiposo precondicionadas con hipoxia (2% O2 y 5% CO2). Realizamos análisis morfológico directo y con inmunofluorescencia con el marcador vimentina y CD90 y estudio de proliferación y migración celular in vitro. Resultados: Utilizamos en promedio 1.64 +/- 1.13 gr de tejido adiposo en el grupo sin precondicionamiento y 0.93 +/- 0.34 gr en el grupo con precondicionamiento con hipoxia para el aislamiento. Las células madre derivadas de tejido adiposo precondicionadas con hipoxia presentaron un aumento de la capacidad migratoria a las 24 horas de 2.44 +/- 0.85 mm frente a 2.24 +/- 0.82 mm (p ≤ 0.01) y proliferativa 5.42 x105 +/- 1.03 x105 céls/ml frente a 3.26 x105 +/- 8.61 x104 céls/ml) (p ≤ 0.001) de forma significativa en comparación a las sin precondicionamiento. Conclusiones. Describimos en detalle un método de precondicionamiento de células madre mediante hipoxia. Logramos potenciar el efecto de las células madre aumentando en forma significativa su capacidad migratoria y proliferativa de forma precoz
Background and objective. Stem cells are therapeutic candidates for a wide range of diseases. They are of great interest in Plastic Surgery for the management of chronic wounds, adipose tissue transfer and flaps. The objective of this study is to describe the method of isolation, culture and characterization of stem cells derived from adipose tissue and how these can be preconditioned with hypoxia and generate in vitro changes in their proliferative and migratory capacity. This study is a didactic supplement to a paper published by us in this same journal using this methodology in comparison to the group of flap delay and control group in skin flaps randomized in rats. Methods. Stem cells were obtained from inguinal-abdominal fatty tissue of adult rats: 10 in the group of stem cells derived from adipose tissue and another 10 in the group of stem cells derived from adipose tissue preconditioned with hypoxia (2% O2 and 5% CO2). Direct morphological analysis was carried out and with immunofluorescence (vimentin and CD90 marker). Study proliferation and in vitro cell migration was performed. Results. An average of 1.64 +/- 1.13 gr of adipose tissue of the inguinoabdominal area was used in the group of stem cells without preconditioning and 0.93 +/- 0.34 gr. in the group with hypoxic preconditioning for the isolation. Stem cells derived from adipose tissue preconditioned with hypoxia showed an increase in migratory capacity at 24 hours of 2.44 +/- 0.85 mm v/s 2.24 +/- 0.82 mm (p ≤ 0.01) and proliferative of 5.42 x105 +/- 1.03 x105 cells / ml v/s 3.26 x 105 +/- 8.61 x104 cells / ml) (p ≤0.001) significantly compared to those without preconditioning. Conclusions. A method of preconditioning stem cells by hypoxia is described in detail. It is possible to enhance the effect of the stem cells, significantly increasing their early migratory and proliferative capacity
